Nyamuk Culex

ENTOMOLOGI

Nyamuk Culex sp

            Culex adalah genus nyamuk yang berperan sebagai vector pada beberapa penyakit. Nyamuk ni termasuk ordo dipteral, family culicidae dan sub family culicinae. Nyamuk Culex sp terdapat pada daerah tropis dan sub tropis di seluruh dunia dalam garis lintang 35^oLU dan 35^oLS, dengan ketinggian wilayah kurang dari 1000m diatas permukaan laut.

1.1 Taksonomi

·         Kingdom         : Animal

·         Phylum            : Arthropoda

·         Family             : Culicidae

·         Kelas               :Insecta

·         Ordo                : Dipthera

·         Sub family       : Culicini

·         Genus              : Culex

·         Species            : Culex sp

·         Sub species      :

o   Culex annulirostris

o   Culex antennatus

o   Culex jenseni

o   Culex pipiens

o   Culex pusillus

o   Culex guinguefasciatus

o   Culex rajah

o   Culex restuans

o   Culex salinarius

o   Culex tersalis

o   Culex territans

o   Culex theileri

o   Culex tritaeniorhynchus

1.2 Morfologi nyamuk Culex sp

1.2.1 Telur Culex sp

      Telur berwarna coklat, panjang dan silinder, vertical pada permukaan air, tersementasi pada susunan 300 telur. Panjangnya biasanya 3-4mm dan lebarnya 2-3mm. telur-telur Culex sp diletakkan secara berderet-deret rapi seprti kait tanpa pelampung yang berbentuk menyerupai peluru senapan

 

                                                                                                                   

1.2.2 Larva nyamuk Culex sp

      Pada larva nyamuk culex sp mempunyai siphon yang mengandung bulu-bulu siphon (siphonal tuft) dan pekten, sisir atau comb dengan gigi-gigi sisir (comb teeth), segmen anal dengan pelana tertutup dan tampak tergantung pada permukaan air.

Nyamuk Culex mempunyai 4 tingkatan atau instar sesuai dengan pertumbuhan larva tersebut, yaitu :

1.      Larva instar I, berukuran paling kecil yaitu 1 – 2 mm atau 1 – 2 hari setelah menetas. Duri-duri (spinae) pada dada belum jelas dan corong pernafasan pada siphon belum jelas.

2.      Larva instar II, berukuran 2,5 – 3,5 mm atau 2 – 3 hari setelah telur menetas. Duri-duri belum jelas, corong kepala mulai menghitam.

3.      Larva instar III, berukuran 4 – 5 mm atau 3 – 4 hari setelah telur menetas. Duri-duri dada mulai jelas dan corong pernafasan berwarna coklat kehitaman.

4.      Larva IV, berukuran paling besar yaitu 5 – 6 mm atau 4 – 6 hari setelah telur menetas, dengan warna kepala.

 

               

1.2.3 Pupa nyamuk Culex sp

Tubuh pupa berbentuk bengkok dan kepalanya besar. Pupa membutuhkan waktu 2-5 hari. Pupa tidak makan apapun. Sebagian kecil tubuh pupa kontak dengan permukaan air, berbentuk terompet panjang dan ramping, setelah 1 – 2 hari akan menjadi nyamuk Culex.

 

                                                                                            1

 

                                                                                            2

                                                                                            3

1.2.4 Nyamuk dewasa

Ciri-ciri nyamuk Culex dewasa adalah berwarna hitam belang-belang putih, kepala  berwarna hitam dengan putih pada ujungnya. Pada bagian thorak terdapat 2 garis putih berbentuk kurva. Palpus nyamuk betina lebih pendek dari proboscis, sedagkan pada nyamuk jantan palpus dan proboscis sama panjang. Pada sayap mempunyai bulu yang simetris dan tanpa costa. Sisik sayap membentuk kelompok sisik berwarna putih dan kuning atau putih dan coklat juga putih dan hitam. Ujung abdomen nyamuk culex selalu menumpul.  

 

1.3 Siklus hidup Culex sp

1. Telur

Seekor nyamuk betina mampu meletakan 100-400 butir telur. Setiap spesies nyamuk mempunyai kebiasaan yang berbeda-beda. Nyamuk Culex sp meletakan telurnya diatas permukaan air secara bergelombolan dan bersatu membentuk rakit sehingga mampu untuk mengapung.

2. Larva

Setelah kontak dengan air, telur akan menetas dalam waktu 2-3 hari. Pertumbuhan dan perkembangan larva dipengaruhi oleh faktor temperature, tempat perindukan dan ada tidaknya hewan predator. Pada kondisi optimum waktu yang dibutuhkan mulai dari penetasan sampai dewasa kurang lebih 5 hari.

c.       Pupa

Pupa merupakan stadium terakhir dari nyamuk yang berada di dalam air, pada stadium ini tidak memerlukan makanan dan terjadi pembentukan sayap hingga dapat terbang, stadium kepompong memakan waktu lebih kurang satu sampai dua hari. Pada fase ini nyamuk membutuhkan 2-5 hari untuk menjadi nyamuk, dan selama fase ini pupa tidak akan makan apapun dan akan keluar dari larva menjadi nyamuk yang dapat terbang dan keluar dari air.

d.      Dewasa

Setelah muncul dari pupa nyamuk jantan dan betina akan kawin dan nyamuk betina yang sudah dibuahi akan menghisap darah waktu 24-36 jam.

 

1.4 Penyakit yang ditimbulkan nyamuk Culex sp

1.   Filariasis

Filariasis atau penyakit kaki gajah adalah penyakit menular yang disebabkan oleh cacing Filaria yang ditularkan oleh berbagai jenis nyamuk seperti Anopheles, Culex, Mansonia, Aedes dan Armigeres. Penyakit ini bersifat menahun (kronis) dan bila tak mendapatkan pengobatan dapat menimbulkan cacat menetap berupa pembesaran kaki, lengan, dan alat kelamin baik perempuan maupun laki-laki.

·      Cara penularan

Penderita awalnya digigit nyamuk yang sudah "terkontaminasi" larva stadium III. Siklus penularan penyakit kaki gajah melalui dua tahap. Pertama, tahap perkembangan dalam tubuh nyamuk. Kedua, tahap perkembangan dalam tubuh manusia.

·         Gejala
Demam selama 3 ­ 5 hari, pembengkakan kelenjar getah bening, panas dan sakit terasa menjalar dari pangkal kaki atau pangkal lengan.

·         Pengobatan
Dititik beratkan untuk mencegah kecacatan dan mengurangi sakit.

2. West Nile Virus

Virus Nil Barat (west nile virus/WNV) termasuk arbovirus yang ditularkan nyamuk. Tiga faktor utama kemunculan WNV adalah perubahan iklim, populasi burung yang terinfeksi dan penyebaran populasi nyamuk, khususnya nyamuk culex.

·         Cara penularan
Pada awalnya virus tersebut hidup pada tubuh burung. Dari burung lalu "disebarluaskan" oleh nyamuk. Virus ini dapat menimbulkan penyakit bagi manusia dan sejumlah mamalia.

·         Gejala
Saat terinfeksi WNV tidak terlihat gejala-gejala tertentu kecuali seperti orang terkena flu. Namun akibatnya bisa sangat serius termasuk encephalitis (radang otak).

·         Pengobatan
Sejauh ini belum ada pengobatan khusus atau vaksin untuk mengatasi infeksi WNV.

3. Japanese Encephalitis

Japanese Encephalitis adalah penyakit yang disebabkan oleh virus. Virus ini disebarkan melalui gigitan nyamuk Culex.

·         Cara penularan
Awalnya virus Japanese Encephalitis berkembang biak dalam tubuh babi. Lalu, nyamuk betina Culex mengisap darah babi dan menularkan virus ini saat menggigit manusia.

·         Gejala
Demam, sakit kepala, lemah, mengingau, mengantuk, lumpuh, bahkan pingsan

1.4 Pengendalian nyamuk Culex sp

Secara garis besar ada 2 cara pengendalian vector, yaitu :

1. Pengendalian secara kimiawi biasanya digunakan insektisida dari golongan orghanochlorine, organophosphor, carbamate dan pyrethoid. Bahan-bahan tersebut dapat diaplikasikan dalam bentuk penyemprotan terhadap rumahrumah penduduk.

2. Pengendalian lingkungan digunakan beberapa cara antara lain dengan mencegah nyamuk kontak dengan manusia yaitu dengan memasang kawat kasa pada lubang ventilasi, jendela dan pintu. Cara yang lain yaitu dengan gerakan 3M “Plus” yaitu:

a.    Menguras tempat-tempat penampungan air,

b.   menutup rapat tempat penampungan air,

c.    menimbun barang-barang bekas atau sampah yang dapat menampung air hujan dalam tanah.

d.   “Plus” menabur bubuk pembasmi jentik (larvasida), memelihara ikan pemakan jentik di tempat penampungan air dan pemasangan kelambu.

1.5 Distribusi geografik

Nyamuk Culex sp terdapat pada daerah tropis dan sub tropis di seluruh dunia dalam garis lintang 35^oLU dan 35^oLS, dengan ketinggian wilayah kurang dari 1000m diatas permukaan laut. Nyamuk dewasa merupakan ukuran paling tepat untuk memprediksi potensi penularan arbovirus. Larva dapat di temukan dalam air yang mengandung tinggi pencemaran organik dan dekat dengan tempat tinggal manusia. Betina siap memasuki rumah-rumah di malam hari dan menggigit manusia dalam preferensi untuk mamalia lain.

                                                                                   

Cairan Sendi

BAB I

PENDAHULUAN

1.1  Latar Belakang

Hubungan dua tulang disebut persendian (artikulasi). Sendi merupakan hubungan antar tulang sehingga tulang dapat digerakkan. Beberapa komponen penunjang sendi antara lain  kapsula sendi, ligamen (ligamentum), tulang rawan hialin (kartilago hialin), cairan sinovial atau cairan sendi. Cairan sendi adalah cairan pelumas yang terdapat pada sendi yang dihasilkan dari ultrafiltrasi plasma dan mengandung asam hialuronat. Asam hialuronat ini menyebabkan cairan sendi bersifat kental sehingga cairan sendi dapat berfungsi sebagai pelumas (Ema, 2011).

Cairan synovial akan memberikan nutrisi bagi tulang rawan sehingga tidak terjadi gesekan dalam pergerakan sendi. Pemeriksaan cairan sendi dilakukan untuk membantu mendiagnosis penyebab peradangan, nyeri, dan pembengkakan pada sendi. Cairan sendi diambil menggunakan jarum yang ditusuk kedalam cairan itu berada diarea antara tulang pada sendi tersebut (Kadir. A, 2012)

Indikasi memeriksa cairan sendi diberikan oleh bertambah banyaknya cairan itu dan pemeriksaan laboratorium membantu diagnosis kelainan. Aspirasi cairan sendi haus mengindahkan syarat-syarat asepsis dan aspirat ditampung dalam 3 tabung steril. Dua tabung diisi heparin steril untuk bermacam-macam pemeriksaan, sedangkan tabung ketiga tidak diberikan antikoagulan. Masing-masing tabung diisi 1-3 mL cairan (Gandasoebrata,2006).

1.2  Rumusan Masalah

1.2.1        Bagaimanakah proses pengambilan sampel cairan sendi?

1.2.2        Apa saja jenis pemeriksaan cairan sendi?

1.3  Tujuan

1.3.1        Untuk mengetahui proses pengambilan sampel cairan sendi.

1.3.2        Untuk mengetahui jenis pemeriksaan cairan sendi.

1.4  Manfaat

1.4.1        Memberikan informasi tentang cairan sendi.

1.4.2        Menambah pengetahuan penulis dan pembaca tentang cara pengambilan sampel cairan sendi dan jenis pemeriksaan cairan sendi.

1.4.3        Menambah referensi tentang cairan sendi.

BAB II

PEMBAHASAN

2.1 Proses Pengambilan Sampel Cairan Sendi

            Arthrocentesis dilakukan oleh dokter atau paramedik terlatih dengan mengunakan alat yang steril dan tepat.

Pre Analitik

1. Spuit yang digunakan (19/21 untuk sendi besar, 23/25 untuk sendi kecil).
2. Digunakan sarung tangan steril.
3. Dilakukan anastesi lokal (lidokain atau etiklorida spray).
4. Kapas alkohol dan betadine.
5. Empat tabung penampungan tanpa antikoagulan.

Analitik

1. Ditentukan lokasi penusukan, daerah ektensor lebih aman (bebas saraf) dan beri tanda.
2. Dilakukan tindakan aseptik pada lokasi.
3. Dilakukan anastesi lokal (inflamasi lidokain/prokain dengan jarum halus atau etiklorida spray).
4. Ditusuk daerah yang sudah ditandai dengan spuit yang berisi 25 µ sodium heparin (dibilas) dan gunakan jarum yang sesuai hingga terasa jarum menembus membran sinovia (seperti menusuk kertas).
5. Dilakukan aspirasi perlahan-lahan (untuk meminimalisasi nyeri).
6. Spesimen ditampung (sesuai urutan tabung pertama kali diisi).

~   Tabung I  (tabung heparin ) steril untuk pemeriksaan mikrobiologis (gram dan biakan).

~   Tabung II (tabung EDTA) untuk pemeriksaan mikroskopis, memeriksa kristal, dan hitung jenis sel.

~   Tabung III (tanpa EDTA) untuk pemeriksaan kimia atau imunologi dan untuk pemeriksaan makroskopis.

Hal-hal yang perlu  diperhatikan dalam pengambilan sampel:

1.      Mengetahui apakah pasien mempunyai gangguan hemostasis.

2.      Melakukan dengan tehnik yang benar dan berusaha untuk selalu steril.

3.      Sampel yang didapatkan sesegera mungkin untuk dibawa kelaboratoium.

4.      Jika akan dikerjakan pemeriksaan glukosa cairan sendi maka pasien dipuasakan 6-8 jam terebih dahulu.

5.      Bila dikehendaki antikoagulan digunakan heparin.

6.      Bila akan dilakukan pemeriksaan mikrobiologi wadah untuk menampung cairan sendi harus steril (Suwasono, 2009).

 

Proses Pengambilan Sampel Cairan Sendi

Contoh Lokasi pengambilan cairan sendi

                                                                                                       

2.2 Pemeriksaan Cairan Sendi

A.    TES MAKROSKOPI

Ø  Warna dan kejernihan :

Pre Analitik

Persiapan pasien : tidak dibutuhkan persiapan khusus.

Persiapan sampel : tidak ada persiapan khusus.

Prinsip tes : setiap kelainan memberi warna dan kejernihan yang berbeda.

Alat : tabung yang steril.

Analitik
Cara kerja :

1.      Sampel dimasukan kedalam tabung steril

2.      Dilihat warna dan kejernihan sampel .

Nilai rujukan : tidak berwarna dan jernih.

Pasca Analitik

Interpretasi :

·         Kuning jernih : artritis traumatik, osteoartritis dan artritis rematoid  ringan.

·         Kuning keruh : inflamasi spesifik dan non spesifik, karena bertambahnya lekosit.

·         Seperti susu (chyloid) : artritis rematoid dengan efusi kronik, pirai dengan efusi akut dan obstruksi limfatik dengan efusi.

·         Seperti nanah atau purulent : artritis septik yang lanjut.

·         Seperti darah : pada trauma, hemofilia dan sinovisitis vilonodularis hemoragik. Bila darah terjadi karena trauma pada waktu aspirasi maka warna merahnya akan berkurang bila aspirasi diteruskan, sedangkan jika bukan oleh trauma maka warna merah akan menetap.

·         Kuning kecoklatan : pada perdarahan yang telah lama (Gandasoebrata,2006).

Perbandingan cairan sendi pada beberapa keadaan

 

·        
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 

Ø  Bekuan
Pre analitik

Persiapan pasien : tidak dibutuhkan persiapan khusus.

Persiapan sampel : tidak ada persiapan khusus.

Prinsip tes : fibrinogen menyebabkan sampel membeku.

Alat : tabung yang steril.

Analitik
Cara kerja :

1.      Sampel dimasukan kedalam tabung steril

2.      Dibiarkan sampel selama 1 jam

3.      Dilihat ada tidaknya bekuan.

 Nilai rujukan : tidak membeku.

Pasca analitik

Interpretasi :

Bekuan + : ada proses peradangan (Gandasoebrata,2006).

Ø  Viskositas
Pre analitik

Persiapan pasien : tidak dibutuhkan persiapan khusus.

Persiapan sampel : tidak ada persiapan khusus.

Prinsip tes : asam hialuronat dalam cairan sendi menentukan viskositas cairan.

Alat : spuit atau semprit tanpa jarum.

Analitik
Cara kerja :

1.      Dihisap sampel ke dalam spuit atau semprit tanpa jarum.

2.      Diteteskan sampel ke luar dari spuit tersebut.

3.      Diukur panjang tetesan. Atau diambil sampel dengan jari telunjuk, direntangkan antara jari telunjuk dan ibu jari.

4.      Hitung panjang rentangan.

Nilai rujukan : panjangnya tanpa putus 4-6 cm disebut viskositas tinggi.

Pasca analitik

Interpretasi :

non inflamatorik ® Viskositas tinggi.

Viskositas menurun (< inflamatorik akut dan septik) hemoragik ®Viskositas bervariasi (Gandasoebrata,2006).

B.     TES MIKROSKOPIS

Ø  Jumlah lekosit

Hasil hitung lekosit total maupun hitung jenis lekosit pada sendi dapat membedakan inflammatory arthritis, non inflammatory arthritis dan infectious arthrtis.

Pre analitik

Persiapan pasien : tidak dibutuhkan persiapan khusus.

Persiapan sampel :

-          Sampel diencerkan dengan NaCl 0,9% atau metilen biru dalam NaCl 0,9% untuk cairan yang jernih.

-          Jika cairan sendi terlalu kental kemungkinan sulit untuk dipipet, maka sampel harus diencerkan dengan buffer hialuronidase.

-          Bila cairan sendi banyak mengandung eritrosit, maka digunakan HCl 0,1% atau saponin 1%, karena  cairan ini dapat melisiskan eritrosit.

Prinsip tes : Sampel diencerkan dan dimasukkan ke dalam kamar hitung (hemositometer). Dengan memperhitungkan faktor pengenceran, jumlah lekosit dalam darah dapat diketahui.

Analitik
Cara kerja :

1.      Dipipet sampel ke dalam pipet lekosit sampai tanda 0,5.

2.      Dipipet NaCl 0,9% sampai tanda 11, kocok isi  pipet beberapa menit agar isi  pipet bercampur baik.

3.      Kemudian dibuang  4 – 5 tetes isi  pipet.

4.      Disiapkan kamar hitung dengan cover glass di atasnya.

5.      Diteteskan isi pipet pelahan-lahan ke dalam kamar hitung

6.      Dihitung jumlah lekosit yang tampak dalam 4 kotak lekosit dengan menggunakan perbesaran lensa objektif 10 x dan hasilnya dikali 50 (pengenceran).

Nilai rujukan: jumlah lekosit  < 200/mm3.

Pasca analitik

Interpretasi :

o   Jumlah lekosit 200-500/mm3 penyakit non inflamatorik (penyakit degeneratif).        

o   Jumlah lekosit  2.000-100.000/mm3   menandakan inflamatorik akut.

~   Artritis gout akut : jumlah lekosit 750-45.000/mm3, rata-rata 13.500/mm3.

~   Faktor rematoid : jumlah lekosit  300-98.000/mm3, rata-rata 17.800/mm3

~   Artritis rematoid : jumlah lekosit  300-75.000/mm3, rata-rata 15.500/mm3.

~   Septik (infeksi) : jumlah lekosit 20.000-200.000/mm3

~   Artritis TB : jumlah lekosit 2.500-105.000/mm3, rata-rata 23.500/mm3.

~   Atritis gonore : jumlah lekosit 1.500-108.000/mm3, rata-rata 14.000/mm3.

~   Atritis septik : jumlah lekosit 15.600-213.000/mm3, rata-rata 65.400/mm3.

~   Hemoragik : jumlah lekosit 200-10.000/mm3

(Gandasoebrata,2006).

Ø  Hitung Jenis

Hitung jenis lekosit pada sendi dapat membedakan inflammatory arthritis, non inflammatory arthritis dan infectious arthrtis.

Pre Analitik

Persiapan pasien : tidak dibutuhkan persiapan khusus.

Persiapan sampel :

-             Sampel harus diperiksa < 1 jam setelah pengambilan.

-             Sampel dapat langsung dari cairan aspirasi atau dari sedimen cairan sendi yang telah disentrifus (paling baik).

Prinsip tes : cairan sendi diapuskan di atas obyek glass kemudian diwarnai.

Analitik
Cara kerja pewarnaan MGG :

1.      Diambil cairan  sendi yang telah disentrifuge

2.      Diteteskan 1-2 tetes cairan sendi diatas objek glas, kemudian dibuat hapusan di atas objek glass, dibiarkan mengering.

3.      Difiksasi apusan tersebut dengan metanol selama 5 menit lalu dibilas dengan air mengalir.

4.      Diteteskan  sediaan apusan dengan larutan May Grunwald  ± 1 – 2 menit.

5.      Digenangi dengan larutan buffer pH 6,4 dan diamkan selama 3 menit.

6.      Diwarnai dengan larutan Giemsa yang sudah diencerkan dengan buffer pH 6,4 dan dibiarkan 5 – 10 menit, cuci dengan air mengalir lalu keringkan.

7.      Diamati apusan di bawah mikroskop dengan pembesaran 100 x menggunakan oil emersi.

Nilai rujukan : jumlah netrofil < 25 %.

Pasca analitik

Interpretasi :

Jumlah netrofil < normal atau non inflamatorik®25%  

Jumlah netrofil pada kelompok akut inflamatorik :

~  Artritis gout akut : jumlah netrofil 48 – 94%, rata-rata 83%.

~  Faktor rematoid : jumlah netrofil  8 – 89%, rata-rata 46%.

~  Artritis rematoid : jumlah netrofil  5 – 96%, rata-rata 65%.

~  Artritis tuberkulosa : jumlah netrofil  29 – 96%, rata-rata 67%.

~  Artritis gonore : jumlah netrofil  2 - 96% , rata-rata 64%.

~  Artritis septik : jumlah netrofil  75 – 100%, rata-rata 95%.

~  Jumlah netrofil pada kelompok hemoragik : <50 o:p="">

(Gandasoebrata,2006).

Ø  Kristal-kristal
Pre analitik

Persiapan pasien : tidak diperlukan persiapan khusus.

Persiapan sampel : sampel disentrifus terlebih dahulu.

Prinsip tes : jenis kristal tergantung jenis kelainan.

Analitik
Cara kerja :

1.      Diteteskan satu sampai dua tetes cairan sendi yang telah disentrifus diatas objek glass dan ditutup dengan cover glass.

2.      Diperiksa dengan mikroskop lensa objektif 10x dan 40x.

Nilai rujukan : tidak ditemukan kristal dalam cairan sendi.

Pasca analitik

Interpretasi :

~   Kristal monosodium urat (MSU) ditemukan pada artritis gout.

~   Calcium pyrophosphate dihydrate (CPPD) yang ditemukan pada kondro-kalsinosis (pseudogout).

~   Calcium hydroxyapatite (HA) terdapat pada calcific periarthritis dan tendenitis.

~   Kristal kolesterol ditemukan pada artritis rematoid.

(Gandasoebrata,2006)

C.     TES KIMIA

Ø  Tes bekuan mucin

Pre analitik

Persiapan pasien : tidak dibutuhkan persiapan khusus.

Persiapan sampel : tidak ada persiapan khusus.

Prinsip tes : asam asetat dapat membekukan asam hialuronat dan protein.
Alat dan bahan :

1.            Tabung reaksi

2.            Pengaduk

3.            Aquades

4.            Asam asetat glacial

5.            Asam asetat 7 N

Analitik
Cara kerja :

1.      Kedalam 1 tabung reaksi dimasukan 4mL aquadest.

2.      Dimasukan sebanyak 1 mL cairan sendi.

3.      Diteteskan 1 tetes larutan asam asetat 7 N.

4.      Diaduk kuat-kuat dengan batang pengaduk.

5.      Kemudian diperiksa hasil reaksi segera setelah diaduk dan setelah 2 jam.

Nilai rujukan

Terlihat satu  bekuan kenyal dalam cairan jernih ® Mucin baik :  normal. (Gandosoebrata,2010)

Pasca analitik

Interpretasi :

·         Mucin sedang : jika  bekuan   kurang  kuat  dan  tidak  mempunyai                           batas tegas dalam cairan jernih. Misalnya  pada RA.

·         Mucin buruk : jika  bekuan yang  terjadi  berkeping-keping dalam

                     cairan keruh, misalnya karena infeksi.

(Gandasoebrata,2006).

Ø  Tes Glukosa

Pre analitik

Persiapan pasien : pasien harus berpuasa 6-12 jam sebelum pengambilan sampel.
Persiapan sampel :  tidak hemolisis, cairan sendi disentrifus terlebih dahulu.

Analitik
Cara Kerja:

Tes Glukosa menggunakan alat Cobas Mira

1.      Masukkan 50 μl sampel cairan sendi ke dalam tabung mikro

2.      Kemudian letakkan dalam rak sampel sesuai dengan nomor pemeriksaan

3.      Tempatkan reagen pada rak reagen sesuai program tes (protein, glukosa, LDH)

4.      Masukkan nomor identitas penderita dan program tes

5.      Pengukuran akan dilakukan secara otomatis

6.      Hasil tes akan keluar pada print out

Nilai rujukan:  Perbedaan  antara  glukosa serum dan glukosa cairan sendi adalah < 10 mg%.

Pasca analitik

Interpretasi :

Kelompok non inflamatorik : perbedaannya <10 mg="" o:p="">

Kelompok inflamatorik :

~   arthritis gout akut ® perbedaannya  0 – 41 mg%, rata-rata 12 mg%.

~   faktor rematoid ® perbedaannya  6 mg%.

~   artritis rematoid ® perbedaannya  0 – 88 mg%, rata-rata 31 mg%.

Kelompok septik :

~   artritis tuberkulosa ®  perbedaannya  0 – 108 mg%, rata-rata 57 mg%.

~   artritis gonore ®  perbedaannya  0 – 97 mg%, rata-rata  26 mg%.

~   artritis septik ®  perbedaannya  40 – 122 mg%, rata-rata  71 mg%.

~   Kelompok hemoragik ®  perbedaannya < 25 mg% (Kadir. A, 2012).

Ø  Tes Laktat dehidrogenase (LDH)

Pre analitik

Persiapan pasien : tidak ada persiapan khusus.

Persiapan sample : tidak ada persiapan khusus.

Analitik

Tes Laktat dehidrogenase (LDH) menggunakan alat Cobas Mira

1.      Masukkan 50 μl sampel cairan sendi ke dalam tabung mikro.

2.      Kemudian letakkan dalam rak sampel sesuai dengan nomor pemeriksaan.

3.      Tempatkan reagen pada rak reagen sesuai program tes (protein, glukosa, LDH).

4.      Masukkan nomor identitas penderita dan program tes.

5.      Pengukuran akan dilakukan secara otomatis.

6.      Hasil tes akan keluar pada print out.

Nilai rujukan : 100-190 U/L

Pasca analitik

Interpretasi : LDH meningkat pada RA, gout dan artritis karena infeksi, tetapi tetap normal pada penyakit sendi generative (Kadir. A, 2012).

BAB III

PENUTUP

3.1    Simpulan

Cairann sendi adalah cairan pelumas yang terdapat pada sendi. Pemeriksaan cairan sendi dilakukan untuk membantu mendiagnosis penyebab peradangan, nyeri, dan pembengkakan pada sendi. Dalam proses pengambilan sampel cairan sendi yang perlu diperhatikan yaitu sterilitas dalam proses pengambilan dan menggunakan teknik pengambilan yang benar. Jenis pemeriksaan dari cairan sendi diawali dengan pemeriksaan makroskopi, pemeriksaan mikroskopi dan pemeriksaan kimia.

3.2    Saran

1.   Pada saat pengambilan cairan sendi, sangat memperhatikan sterilitas dan memerlukan keahlian khusus agar tidak berpengauh terhadap pemerikasaan.

2.   Saat melakukan pemeriksaan cairan sendi baik makroskopis, mikroskopis dan kimia perlu memperhatikan pra analitik, analitik dan post analitik agar mendapatkan hasil yang akurat